《自然·醫學》:華西團隊發佈世界首個CRISPR基因編輯臨床試驗的數據,證實CRISPR編輯T細胞治晚期肺癌安全可行丨臨床大發現

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翹首期盼了近4年,終於等到研究成果了。

今天,四川大學華西醫院盧鈾教授團隊在頂級期刊《自然·醫學》上發佈最新研究成果[1]:使用CRISPR-Cas9編輯的T細胞在臨床上治療疾病是安全可行的

這項研究成果再次證實了CRISPR基因編輯技術在臨床應用中的安全性,為後續類似研究的開展奠定了基礎。

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論文首頁截圖

盧鈾教授團隊發起的這項基因編輯臨床研究,其實是世界第一個CRISPR療法人體試驗,開始於2016年6月。

當時的情況是,大量的基礎研究證實,CRISPR-Cas9是一種方便、靈活、精確的基因編輯方法。但是CRISPR-Cas9在臨床應用中的安全性還需臨床研究檢驗。

在CRISPR-Cas9基因編輯技術冉冉升起的時候,癌症免疫療法也在蓬勃發展。阻斷PD-1/PD-L1通路的PD-1抑制劑,已經成為PD-L1表達陽性的晚期非小細胞肺癌(NSCLC)的一線治療藥物。這一療法甚至能將患者的5年生存率提高到15.5%-23%[2]。

免疫療法的成功,讓盧鈾教授團隊想到:破壞T細胞的PD-1,然後將T細胞回輸給患者,對於晚期肺癌的治療可能也是有效的

這個猜想一方面是基於免疫治療的基本邏輯,另一方面是基於當時已經存在的兩個基礎研究:用鋅指編輯技術編輯T細胞的PD-1,可以增強T細胞對黑色素瘤細胞的毒性[3];以及用CRISPR-Cas9破壞T細胞的PD-1,可在模式小鼠身上對抗胃癌[4]。

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T細胞和腫瘤細胞之間的PD-1/PD-L1通路

基於以上的研究成果,盧鈾教授團隊在晚期胃癌患者中,開展了臨床研究。由於是首個人體臨床試驗,考慮到倫理學問題和脫靶突變的風險,他們在劑量遞增的I期臨床試驗中,只招募那些經過多種療法治療之後依然無效的NSCLC患者

在2016年8月26日到2018年3月21日之間,一共招募了22名患者。研究人員從患者體內採集T細胞,然後用電穿孔的方法將CRISPR-Cas9編輯系統轉入T細胞中[5],破壞PD-1基因的2號外顯子

總體來看,基因編輯的效率在8.7%到31.2%之間,中值是20.1%。在編輯過的T細胞中,PD-1的表達水平明顯降低,PD-1的破壞率在33.7%到67%之間,中值是46.3%。

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基因編輯T細胞的機制,及編輯效果

在招募的22名患者中,有5名患者因T細胞體外擴增不足,沒有接受治療,餘下的17名患者均獲得了高活性(90%)的編輯後的T細胞。製備T細胞的中位時間是25天(17-40天)

只不過,在回輸編輯過的T細胞之前,有2人疾病進展,1人肺部感染,1人類風溼關節炎加重,1人主動退出研究。最終有12人接受了T細胞的回輸治療。

接受治療的患者以28天為一個週期,分三次注射PD-1被編輯過的T細胞,直到患者疾病進展或者出現不能耐受的毒性為止,每位患者每次回輸T細胞的中位數是1.33億個

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試驗設計流程

從12位接受治療的患者來看,他們的T細胞中位編輯效率是5.81%。在所有被編輯的T細胞中。絕大部分是CD3陽性(中值99.1%),CD3和CD8雙陽性佔比73.5%

與未被編輯的T細胞相比,在被編輯過的T細胞中,CD8和IFN-γ雙陽性的佔比顯著增加。這表明,破壞T細胞的PD-1之後,T細胞的活性增強了

至於大家最關心的編輯脫靶率,研究人員也做了深入的研究。總體來看,中位脫靶率是0.05%,遠遠低於1.69%的中靶率。基於這個數據,研究人員認為,CRISPR-Cas9編輯T細胞是安全的。

具體來看,在主要的脫靶導致的突變中,會導致移碼變異的插入/缺失佔比71.2%,不會導致移碼的插入/缺失佔比28.6%,其他類型變異極少。還有一點值得一提的是,這些突變主要出現在基因之間(48.1%)或者內含子(35.1%)區域,對基因功能的影響不大

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脫靶的情況分析

從安全性上來看,在12名接受治療的患者中,有1名患者沒有出現治療相關不良事件,其餘11名患者發生了1/2級與治療相關的不良事件,例如淋巴細胞減少症(3例),疲勞(3例),白細胞減少症(2例),發燒(2例),關節痛(2例)和皮疹(2例)。

這就意味著沒有患者出現3級及以上的不良事件,而且沒有患者出現細胞因子釋放綜合徵。也就是說,CRISPR破壞T細胞的PD-1,作為一種治療策略是安全的

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治療相關的副作用

從治療的效果上看,在長達47.1周的中位隨訪時間內,12位患者的中位無進展生存期(PFS)是7.7周,中位總生存期(OS)為42.6周。不過沒有患者獲得部分緩解,只有兩名患者病情穩定。

截至2020年1月31日,所有患者出現疾病進展。在12名患者中,有11名(91.7%)死於腫瘤進展,所有患者的死亡均與治療無關。剩下的一名患者仍在接受其他治療。

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患者的治療情況

基於以上數據,研究人員認為,他們的研究成果進一步支持了由CRISPR-Cas9技術進行的基因編輯T細胞療法在臨床上的安全性和可行性,這也與Carl June團隊近期發表的結果一致[6]。

至於大家擔心的脫靶效應,一是脫靶率低,二是絕大多數發生在非編碼區,這不太可能對編碼基因產生重大影響。

雖然CRISPR-Cas9技術的臨床使用的長期安全性仍然需要關注,但是在本研究中,他們發現被編輯的T細胞壽命較短,因此他們認為永久性基因組改變的風險是有限的

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參考資料:

[1].https://www.nature.com/articles/s41591-020-0840-5

[2].Garon E B, Hellmann M D, Rizvi N A, et al. Five-Year Overall Survival for Patients With Advanced Non‒Small-Cell Lung Cancer Treated With Pembrolizumab: Results From the Phase I KEYNOTE-001 Study[J]. Journal of clinical oncology: official journal of the American Society of Clinical Oncology, 2019, 37(28): 2518-2527.

[3].Beane J D, Lee G, Zheng Z, et al. Clinical scale zinc finger nuclease-mediated gene editing of PD-1 in tumor infiltrating lymphocytes for the treatment of metastatic melanoma[J]. Molecular Therapy, 2015, 23(8): 1380-1390.

[4].Su S, Zou Z, Chen F, et al. CRISPR-Cas9-mediated disruption of PD-1 on human T cells for adoptive cellular therapies of EBV positive gastric cancer[J]. Oncoimmunology, 2017, 6(1): e1249558.

[5].Su S, Hu B, Shao J, et al. CRISPR-Cas9 mediated efficient PD-1 disruption on human primary T cells from cancer patients[J]. Scientific reports, 2016, 6: 20070.

[6].Stadtmauer E A, Fraietta J A, Davis M M, et al. CRISPR-engineered T cells in patients with refractory cancer[J]. Science, 2020, 367(6481).

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本文作者 | BioTalker


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